产品货号:
SY0397
中文名称:
GST标签蛋白纯化预装柱(1mL)
英文名称:
gStar Glutathione 4FF Chromatography Column,1mL
产品规格:
1ml|5×1ml
发货周期:
1~3天
产品价格:
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本制品是装填了gStar Glutathione Agarose Resin 4FF的一种中压预装柱,规格1mL,预装柱具有标准接口,可以适配商品化的各类中压色谱系统,如ÄKTA等,方便客户操作。
gStar Glutathione Agarose Resin 4FF是一种GST标签蛋白纯化树脂,可以一步纯化各种表达系统中谷胱甘肽-S-转移酶、谷胱甘肽依赖性蛋白和谷胱甘肽重组衍生物。在结构上,该树脂是以高度交联的4%琼脂糖凝胶为基质,通过12个原子的间隔臂,用化学方法共价结合还原型谷胱甘肽制作而成,具有更高的物理化学特性,可以耐受更高的压力,在相对较高的流速下,实现对目的蛋白的纯化,更适于工业大规模蛋白的纯化。
基质 | 高度交联的4%琼脂糖微球 |
配体 | 通过12原子间隔臂偶联的谷胱甘肽 |
粒径 | 45~165μm |
载量 | >10mg GST protein/mL基质(40kDa) |
最大压力 | 0.3 MPa,3 bar |
pH稳定范围 | 3-12 |
储存缓冲液 | 20%乙醇 |
组分 | 1mL | 5×1mL |
GST标签蛋白纯化预装柱(1mL) | 1mL | 5×1mL |
说明书 | 1份 | 1份 |
保存:2~8℃,有效期2年。
- 请勿冷冻保存本制品。
- 所有操作过程中,样本需要在4℃或冰上操作。
- 为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
- 本制品仅作科研用途!
- 所用水和Buffer在使用前最好用0.22μm或0.45μm滤膜过滤除菌。
- 结合/洗杂缓冲液:PBS,pH7.4(140mM NaCl,2.7mM KCl,10mM Na2HPO4,1.8mM KH2PO4,pH7.4)
- 洗脱缓冲液:50mM Tris-HCl,10mM还原型谷胱甘肽,pH8.0
注:结合/洗杂缓冲液或者洗脱缓冲液中可加入1~10mM DTT。
注:样品在上样前最好用0.22μm或0.45μm滤膜过滤,减少杂质以防阻塞柱子。
- 样品纯化(以Akta为例)
- 准备:将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。
- 清洗:3~5倍柱体积去离子水冲洗层析柱中储存液。
- 平衡:用5倍柱体积的结合Buffer平衡层析柱,使填料处于与目的蛋白相同的缓冲体系下,起到保护蛋白的作用。
- 上样:将样品加到平衡好的层析柱中,推荐流速1mL/min,保证目的蛋白与树脂充分接触,提高目的蛋白的回收率,收集流出液,待检测。
注:样品的粘度增加使得即使上样体积很少,也会导致层析柱很大的反压。上样量不要超过柱子的结合能力。大量的样品体积也可能造成很大的反压,使得进样器更难使用。 - 洗杂:用10~15倍柱体积的洗杂Buffer进行清洗,直到紫外吸收达到一个稳定的基线,去除非特异性吸附的杂蛋白,收集洗杂液,待检测。
- 洗脱:用洗脱Buffer采用一步法或线性梯度洗脱。一步洗脱中,通常5倍柱体积洗脱液足够将目的蛋白洗脱下来。也可以用一个小的梯度,例如20倍柱体积或更多,来分离不同结合强度的蛋白质。
- 清洗及保存:依次使用3倍柱体积的结合Buffer和5倍柱体积的去离子水平衡填料,最后再用5倍柱体积的20%的乙醇平衡,然后保存在等体积的20%的乙醇中,置于4℃保存,防止填料被细菌污染。
- 准备:将泵管道中注满去离子水。去掉上塞子,将层析柱连接至色谱系统中。再折断下口,将预装柱接到色谱系统中,并旋紧。
- 检测
将纯化过程中得到的样品(包括原始样品、流出组分、洗杂及洗脱组分等)利用SDS-PAGE进行检测,判定其纯化效果。 - 填料清洗
GST标签蛋白纯化产品可以重复使用而无需再生,但随着非特异结合蛋白的增多和蛋白的聚集,会造成流速和结合载量性能下降,此时需对填料进行清洗。- 去除一些沉淀或变形物质
用2倍柱体积的6M盐酸胍溶液进行清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS,pH7.4清洗。 - 去除一些疏水性吸附造成的非特异性吸附物质
用3~4倍柱体积的70%乙醇或2倍柱体积1% Triton X-100清洗,然后立即用5倍柱体积的PBS,pH7.4清洗。
- 去除一些沉淀或变形物质
问题 | 可能原因 | 推荐解决方案 |
柱子反压过高 | 填料被堵塞 | 清洗树脂 |
裂解液中含有微小的固体颗粒,建议上样前最好用0.22μm或0.45μm滤膜过滤,或离心去除 | ||
样品太黏稠 | 样品中含高浓度的核酸,延长破碎时间直至粘度降低,或添加DNaseI (终浓度为5μg/mL),Mg2+(终浓度1mM),冰上孵育10~15min | |
缓冲液太黏稠 | 有机试剂或蛋白稳定试剂(如甘油等)可能会引起反压增高,降低操作流速 | |
洗脱组分中无目的蛋白 | GST标签蛋白变性了 | 使用温和的裂解条件,实验条件以经验为准 |
过度的裂解使目的蛋白变性 | ||
目的蛋白聚集产生沉淀 | 在细胞裂解前溶液中加入DTT,终浓度为1~10mM | |
融合蛋白改变了GST的构象,影响了目的蛋白的结合力 | 测定pGEX中GST的结合力,对载体进行超声处理,检测其结合力。如果载体中GST有很高的亲和力,有可能是改变融合蛋白的构象从而降低了GST标签蛋白的亲和力 | |
降低结合温度至4℃,充分清洗 | ||
柱子平衡时间太短,目的蛋白不是在pH6.5-pH8.0范围内结合 | 用pH6.5-pH8.0的buffer进行充分的平衡,如PBS | |
目的蛋白没有完全洗脱下来 | 洗脱体积太少 | 增加洗脱液体积,减小洗脱流速。 |
洗脱液中谷胱甘肽浓度太低 | 增加洗脱液中谷胱甘肽浓度,可尝试用50mM Tris-HCl,20~40mM还原型谷胱甘肽pH8.0洗脱 | |
低pH影响洗脱 | 在不增加洗脱液中谷胱甘肽量时,提高洗脱液中pH至pH8~9会有改善 | |
增加洗脱液中离子强度,如0.1-0.2M NaCl | ||
洗脱液中谷胱甘肽被氧化 | 使用新鲜配制的洗脱液 | |
加入DTT | ||
非特异性疏水作用影响目的蛋白的溶解和洗脱 | 洗脱液中加入非离子型洗涤剂,如0.1%的Triton X-100或者2%正辛基-β-D-吡喃葡糖苷Tween-20 | |
电泳或Western Blot检测中发现多条带 | Mr 70000蛋白与目的蛋白一起纯化下来 | Mr 70000蛋白可能是大肠杆菌基因DnaK的产物,可以在目的蛋白中加入50mM Tris-HCl,2mM ATP,10mM MgSO4,pH7.4在37℃加热10min去除 |
可通过ATP-琼脂糖胶或离子交换来去除目的蛋白溶液中的dnaK蛋白 | ||
GST融合蛋白已经发生降解 | 在裂解液中加入蛋白酶抑制剂,如加入1mM PMSF | |
可能是蛋白酶对目的蛋白部分降解造成的,可使用蛋白酶缺陷型宿主菌(如lon-或ompT) | ||
细胞破碎过度 | 减少细胞破碎时间,超声前加入溶菌酶(菌液体积的0.1倍10mg/mL溶菌酶,25mM Tris-HCl,pH8.0),避免发泡导致蛋白酶变性,过度超声破碎增加宿主内源蛋白与GST融合目的蛋白的共纯化。 | |
共价共纯化 | 包括促进蛋白正确折叠的分子伴侣的共纯化,如:DnaK(Mr~70000),DnaJ(Mr~37000),GrpE(Mr~40000),GroEL(Mr~57000),GroES(Mr~10000) | |
抗体与E.coli的各种蛋白反应 | 抗体吸附E.coli蛋白:GST-抗体;超声处理去除GST抗体,可以用Western Blot检测 |
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